产品简介：

    Annexin V-FITC细胞凋亡检测试剂盒(Annexin V-FITC Apoptosis Detection Kit)是用FITC标记的
重组人Annexin V来检测细胞凋亡时出现在细胞膜表面的磷酯酰丝氨酸的一种细胞凋亡检测试剂盒。可以使用流式细胞仪、荧光显微镜或其它荧光检测设备进行检测。
    Annexin是一类广泛分布于真核细胞细胞浆内钙离子依赖的磷酯结合蛋白，参与细胞内的信号转导。
但仅Annexin V被报道可以调控一些PKC的活性。
    Annexin V选择性结合磷酯酰丝氨酸(phosphatidylserine，简称PS)。磷酯酰丝氨酸主要分布在细胞
膜内侧，即与细胞浆相邻的一侧。在细胞发生凋亡的早期，不同类型的细胞都会把磷酯酰丝氨酸外翻到细胞表面，即细胞膜外侧。磷酯酰丝氨酸暴露到细胞表面后会促进凝血和炎症反应。而Annexin V和外翻到细胞表面的磷酯酰丝氨酸结合后可以阻断磷酯酰丝氨酸的促凝血和促炎症反应活性。
    用带有绿色荧光的荧光探针FITC标记的Annexin V，即Annexin V-FITC，就可以用流式细胞仪或荧光显微镜非常简单而直接地检测到磷酯酰丝氨酸的外翻这一细胞凋亡的重要特征。
    本试剂盒还提供了碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)染色液，碘化丙啶可以染色坏死细胞或凋亡晚
期丧失细胞膜完整性的细胞，呈现红色荧光。对于坏死细胞，由于细胞膜的完整性已经丧失，Annexin
V-FITC可以进入到细胞浆内，与位于细胞膜内侧的磷酯酰丝氨酸结合，从而也使坏死细胞呈现绿色荧光。
    一个包装的本试剂盒共可以检测50个细胞样品。
包装清单：

保存条件：
    4℃保存，半年有效。Annexin V-FITC和碘化丙啶染色液需要避光保存。为了长期保存，可以把碘化
丙啶染色液适当分装后-20℃保存，Annexin V-FITC结合液可以直接-20℃保存。
注意事项：
    如果有细菌或真菌污染，会严重影响检测效果。
    染色后宜尽快检测，时间过长可能会导致凋亡或坏死细胞的数量增加。
    如果细胞收集过程中使用了胰酶，需注意设法去除残留的胰酶。残留的胰酶会消化并降解
Annexin V-FITC，最终导致染色失败。
    荧光物质均易发生淬灭，在进行荧光观察时，尽量缩短观察时间，同时在操作和存放过程中也尽量
注意避光保存。
    需自备PBS。
    本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放
于普通住宅内。
    为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
 

使用说明：
1.对于悬浮细胞：
  a. 在进行完细胞凋亡刺激后，1000g(约1000-2000rpm)离心5分钟，弃上清，收集细胞，用PBS轻轻重
     悬细胞并计数。注意：PBS重悬不能省略，PBS重悬的过程同时也起到了洗涤细胞的作用，可以保
     证后续Annexin V-FITC的结合。
  b. 取5-10万重悬的细胞，1000g离心5分钟，弃上清，加入195μl Annexin V-FITC结合液轻轻重悬细
     胞。
  c. 加入5μl Annexin V-FITC，轻轻混匀。
  d. 加入10μl碘化丙啶染色液，轻轻混匀。
  e. 室温(20-25℃)避光孵育10-20分钟，随后置于冰浴中。可以使用铝箔进行避光。孵育过程中可以重
     悬细胞2-3次以改善染色效果。
  f. 随即进行流式细胞仪检测，Annexin V-FITC为绿色荧光，碘化丙啶(PI)为红色荧光，流式检测的效
     果参考图1。如果用于荧光显微镜下检测，1000g离心5分钟，收集细胞，用50-100μl Annexin
     V-FITC结合液轻轻重悬细胞，涂片后，荧光显微镜下观察。
        
    图1.Annexin V-FITC和碘化丙啶染色后的流式细胞仪检测效果图。正常的活细胞不被AnnexinV-FITC和碘化丙啶染色(图中左下部分)；凋亡早期的细胞仅被AnnexinV-FITC染色，碘化丙啶染色呈阴性(图中右下部分)；坏死细胞和凋亡晚期的细胞可以同时被AnnexinV-FITC和碘化丙啶染色(图中右上部分)。图中左上部分出现的是许可范围内的检测误差。

2.对于贴壁细胞：
  a. 把细胞培养液吸出至一合适离心管内，PBS洗涤贴壁细胞一次，加入适量胰酶细胞消化液(可含有
     EDTA)消化细胞。室温孵育至轻轻吹打可以使贴壁细胞吹打下来时，吸除胰酶细胞消化液。需避
     免胰酶的过度消化。
  b. 加入步骤2a中收集的细胞培养液，稍混匀，转移到离心管内，1000g离心5分钟，弃上清，收集细
     胞，用PBS轻轻重悬细胞并计数。注意：加入步骤2A中的细胞培养液一方面可以收集已经悬浮的发
     生凋亡或坏死的细胞，另一方面细胞培养液中的血清可以有效抑制或中和残留的胰酶；残留的胰酶
     会消化并降解后续加入的Annexin V-FITC导致染色失败。
  c. 取5-10万重悬的细胞，1000g离心5分钟，弃上清，加入195μl Annexin V-FITC结合液轻轻重悬细
     胞。
  d. 加入5μl Annexin V-FITC，轻轻混匀。
  e. 加入10μl碘化丙啶染色液，轻轻混匀。
  f. 室温(20-25℃)避光孵育10-20分钟，随后置于冰浴中。可以使用铝箔进行避光。孵育过程中可以重
     悬细胞2-3次以改善染色效果。
  g. 随即进行流式细胞仪检测，Annexin V-FITC为绿色荧光，碘化丙啶(PI)为红色荧光，流式检测的效
     果参考图1。如果用于荧光显微镜下检测，1000g离心5分钟，收集细胞，用50-100μl Annexin
     V-FITC结合液轻轻重悬细胞，涂片后，荧光显微镜下观察。
3.对于贴壁细胞的原位荧光显微镜检测：
  注：本方法的优点是可以原位观察细胞凋亡，缺点是部分凋亡由于不贴壁而检测不到。
  a. (选做)如果条件许可，把细胞培养于24孔板、48孔板或96孔板内。在凋亡诱导结束后，用可以对
     多孔板进行离心的离心机1000g离心5分钟。
  b. 吸除细胞培养液，加入PBS洗涤一次。(如果条件许可，在吸除PBS前1000g离心5分钟。)
  c. 加入195μl Annexin V-FITC结合液。
  d. 加入5μl Annexin V-FITC，轻轻混匀。
  e. 加入10μl碘化丙啶染色液，轻轻混匀。
  f. 室温(20-25℃)避光孵育10-20分钟，随后置于冰浴中。可以使用铝箔进行避光。孵育过程中可以重
     悬细胞2-3次以改善染色效果。
  g. 随即在荧光显微镜下观察，Annexin V-FITC为绿色荧光，碘化丙啶为红色荧光。染色效果可以参考
     图2。
  
  图2.Annexin V-FITC和碘化丙啶(PI)染色效果图。图中绿色荧光为Annexin V-FITC染色阳性细胞，红色荧光为碘化丙啶染色阳性细胞。仅被绿色荧光染色的为凋亡细胞，被绿色和红色荧光双染的是坏死细胞，未被荧光染色的为正常细胞。