实验操作步骤:
1.蛋白质的样品制备:
a.细胞样品的制备:
1.胰酶消化后裂解:细胞培养至80%左右密度时,以含0.25%胰蛋白酶消化,低速离心,弃上清。细胞经预冷的PBS漂洗3次,加入裂解液(根据细胞数量定)反复吹打。
2.皿上直接裂解: 细胞培养至80%左右密度时,细胞经预冷的PBS漂洗3次,加入裂解液(根据细胞数量定),转移至离心管中,反复吹打。
b.组织样品的制备: 新鲜组织块迅速置于预冷的生理盐水中,漂洗数次,按组织净重:裂解液=1:10的比例,加入相应体积的裂解液进行匀浆,离心收集上清(如有粘稠物可超声处理)
c.蛋白变性:处理后的样品加入样品缓冲液混匀,样品置1000C的水浴箱加热3-5分钟,10000g离心10分钟,取上清液。(样品可立即使用也可以分装冻存,-20℃可稳定保持数月。)
2.SDS-PAGE电泳:
a.制胶:
1.按比例配制分离胶(丙烯酰胺母液:单体:双体=29:1),缓缓地摇动溶液,使激活剂混合均匀,将凝胶溶液平缓地注入两层玻璃极中,再在液面上小心注入一层水或正丁醇,以阻止氧气进入凝胶溶液中,37℃恒温箱中静置60min。
2.同前按比例配制浓缩胶,但混匀溶液时不要过于剧烈以免引入过多的氧气。吸去不连续系统中下层分离胶上的水分,以连续平稳的液流注入凝胶溶液,然后小心插入梳子并注意不得在齿尖留有气泡,37℃恒温箱中静置60min以上以保证完全聚合。
b.加样:依次加入标准品和待分析样品。(加样时间要尽量短,以免样品扩散,可在未加样的孔中加入等量的样品缓冲液避免边缘效应。样品一般在1.0mm厚的胶 加样50-100ug/lane)。
c.电泳: 加样完毕,选择适当的电压进行电泳即可。一般采用恒压浓缩胶55V,分离胶75V,电泳直至溴酚蓝染料前沿下至凝胶末端处,即停止电泳。
3.转膜:
蛋白质经SDS-PAGE分离后,从凝胶中转移到固相支持物上,常用的支持物有:硝酸纤维膜即NC膜或PVDF膜。电泳结束后,取出凝胶,在转印缓冲液中漂洗数秒。蛋白质从凝胶向膜转移的过程普遍采用电转印法,包括湿式电转印和干式电转印。
a干式电转印: 将转印槽阴极平放工作台上,并在上面加三张电转印液浸透的1mm厚的滤纸,将电转印液浸透0.45μm的N.C膜放在滤纸上,再将凝胶平放在N.C膜上,最后在凝胶上加盖三层电转印液浸透1mm厚的滤纸,电流根据凝胶面积按1-2 mA/cm2, 接通电源,经1-1.5小时电转印。
b湿式电转印: 打开电转印夹,每侧垫上一块专用的用转印液浸泡透的海面垫,再各放三块转印液浸透的滤纸,滤纸与海面垫大小相同或与NC膜、凝胶大小相同均可,将凝胶平放在阴极侧滤纸上,最后将NC膜平放在凝胶上,按照(-) 夹板-海棉-滤纸-胶块-NC膜-滤纸-海绵-夹板 (+)装好,依次除尽每层间气泡,夹好电转印夹。 电泳槽加满预冷电转印液,插入电转印夹,将电泳槽放入冰箱内,连接好电极,接通电流,转印夹的NC膜应对电泳槽的正极, 4℃ 250-300mA, 转印80min(根据分子量不同,转印时间可适当调整)。
4.膜的封闭:
TBS-T洗膜3次,每次10min, 以尽量洗去转印膜上的SDS (以免影响抗体的结合),加入适量的封闭液,摇床摇动,室温封闭2h或4℃过夜。
封闭液配置:TBS溶液中加入5%的脱脂奶粉。
5.抗体杂交:
a封闭后的杂交膜放入杂交袋中,加入稀释的一抗,4℃孵育过夜或37℃两小时,TBS-T洗膜3次,每次10min。(一抗的稀释度,孵育时间,温度与显色强度,背景有直接关系。一般来说,阳性不强时可提高一抗浓度和延长孵育时间,而背景高,非特异性条带多,则降低抗体浓度和孵育时间)。
b加入稀释的HRP标记羊抗小鼠IgG, 37℃孵育1.5小时或4℃过夜,TBS-T洗膜3次,每次10min。
一抗二抗稀释液配置:TBS溶液中加入5%的脱脂奶粉。
6.显色(ECM)
ECM显色剂配制:显色剂A和显色剂B按1:1的比例混合。将杂交后印迹膜放入显色盒中,加上适量的混合好的显色液反应约1-5分钟。吸去印迹膜边缘显色液,将一透明的玻璃纸盖住抚平,以确保X感光胶片的干燥。印迹膜转入暗室中使胶片曝光30秒-5分钟。将曝光后的X感光胶片放入显影液中至胶片上出现条带,再放入定影液中定影,胶片可长期保存。
荧光成像仪(CCD)检测:将印迹膜放置到荧光成像仪内,按仪器说明书进行检测和记录化学发光图像。
附录:
1:对照的设置 内参: 提示系统的稳定性,一般是一些管家蛋白; 阳性对照:即肯定可以表达目的蛋白的组织或者细胞,同时可以提示你一抗的质量; 阴性对照: 即肯定不会表达目的蛋白的组织或者细胞。
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